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Uno studio su scala del proteoma rivela come le superfici plastiche e l’agitazione promuovano l’aggregazione proteica

Oct 03, 2023Oct 03, 2023

Rapporti scientifici volume 13, numero articolo: 1227 (2023) Citare questo articolo

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L'aggregazione delle proteine ​​nei prodotti bioterapeutici può ridurne l'attività e l'efficacia. Può anche promuovere reazioni immunitarie responsabili di gravi effetti avversi. L’impatto dei materiali plastici sulla destabilizzazione delle proteine ​​non è del tutto compreso. Qui, proponiamo di deconvolvere gli effetti della superficie del materiale, dell'interfaccia aria/liquido e dell'agitazione per decifrare il loro rispettivo ruolo nella destabilizzazione e aggregazione delle proteine. Abbiamo analizzato l'effetto delle superfici in polipropilene, TEFLON, vetro e LOBIND sulla stabilità delle proteine ​​purificate (albumina sierica bovina, emoglobina e α-sinucleina) e su un estratto cellulare composto da 6000 proteine ​​solubili durante l'agitazione (P = 0,1–1,2 W/ kg). L'analisi proteomica ha rivelato che le chaperonine, le proteine ​​intrinsecamente disordinate e i ribosomi erano più sensibili agli effetti combinati delle superfici dei materiali e dell'agitazione, mentre i piccoli oligomeri metabolici potevano essere protetti nelle stesse condizioni. Le osservazioni sulla perdita di proteine ​​accoppiate alla microscopia Raman, alla diffusione dinamica della luce e alla proteomica ci hanno permesso di proporre un modello meccanicistico di destabilizzazione delle proteine ​​da parte della plastica. I nostri risultati suggeriscono che la perdita di proteine ​​non è dovuta principalmente alla nucleazione di piccoli aggregati in soluzione, ma alla destabilizzazione delle proteine ​​esposte alle superfici del materiale e alla loro successiva aggregazione all'interfaccia aria/liquido tagliata, un effetto che non può essere prevenuto utilizzando LOBIND tubi. È possibile stabilire una guida su come ridurre al minimo questi effetti avversi. Togliendo uno dei componenti di questo stress combinato - materiale, aria (anche parzialmente) o agitazione - le proteine ​​verranno preservate.

Il numero di terapie a base di proteine ​​sta aumentando rapidamente. Tuttavia, le proteine ​​sono esposte a stress durante la produzione, che ne influenzano la stabilità. L'aggregazione delle proteine ​​nei prodotti bioterapeutici può ridurne l'attività e l'efficacia, ma può anche promuovere reazioni immunitarie responsabili di gravi effetti avversi come risposte allergiche e anafilassi1.

Sono state sviluppate varie strategie per evitare l'aggregazione delle proteine ​​durante la lavorazione dei prodotti bioterapeutici controllando attentamente l'ambiente locale e il processo o rimuovendo gli aggregati prima del campionamento. I fattori fisici e chimici che determinano la stabilità delle proteine ​​o ne innescano l'aggregazione sono da tempo oggetto di ricerca in campo farmaceutico e biochimico. È noto che l'agitazione, la temperatura, il pH e la forza ionica inducono l'aggregazione proteica1,2,3.

L'effetto dei materiali sulla stabilità delle proteine ​​nella lavorazione bioterapeutica è stato relativamente meno studiato. In effetti, il quadro attuale è stato a lungo quello di una perdita minima di proteine ​​per adsorbimento sulle superfici, dove le interazioni proteina/materiale porterebbero solo alla passivazione superficiale senza influenzare le rimanenti proteine ​​libere in soluzione. A partire dagli anni '70, Leo Vroman4,5 dimostrò che l'adsorbimento delle proteine ​​non era un processo statico, ma piuttosto dinamico in cui gli scambi avvenivano all'interfaccia liquido-solido tra proteine ​​libere e adsorbite a seconda della concentrazione proteica e dell'affinità per la superficie. Questo modello può ora essere completato dalla parziale perdita di stabilità proteica a seguito di deboli interazioni con la superficie e successivo rilascio nella soluzione6, primo passo verso un remoto effetto delle interfacce.

Studi recenti hanno dimostrato che l'effetto destabilizzante delle interfacce solido/liquido sulla stabilità delle proteine ​​era più profondo di quanto inizialmente creduto e poteva essere migliorato mediante agitazione. Gli effetti sinergici del flusso e delle superfici sull'aggregazione degli anticorpi sono già stati descritti7,8. Altri studi hanno sottolineato il ruolo delle bolle d'aria9,10. Queste osservazioni suggeriscono che sia l'interfaccia solido/liquido, sia l'interfaccia aria/liquido sia l'agitazione sono attori chiave quando si considera l'effetto di un nuovo processo o materiale durante la produzione di prodotti bioterapeutici. Tuttavia, manca la descrizione meccanicistica che potrebbe spiegare i processi coinvolti e l'interazione tra le diverse interfacce e l'agitazione sulla stabilità delle proteine. Inoltre, la maggior parte degli studi sperimentali sono stati condotti con singole proteine ​​purificate, che non possono tenere conto del ruolo delle interazioni proteina-proteina quando sono coinvolte diverse proteine, della possibile associazione e dissociazione dei complessi proteici alle interfacce11 e delle variazioni nella sensibilità delle proteine ​​a questi stress.

 1 µm) were identified in the protein solutions after wheel rotating agitation in PP tubes. Optical microscopy using reflected light and contour reconstruction with Fiji software were applied to better visualize their shape and structure (Fig. 7A). The size of the objects ranged from a few to tens of micrometers, though no inner structure could be seen./p> 1) (see supporting file proteomic-SI2 for the protein list). Among these proteins, 58 proteins were highly depleted and 31 proteins were highly enriched, taking a threshold of minimum 15% concentration variation after mixing. No significant differences were observed as a function of the material, with most depleted and most enriched proteins observed for all the different types of surfaces. Highly enriched and highly depleted proteins were classified as complexes, oligomers, chaperonins, partially unfolded proteins or IDPs, and others (Fig. 11)./p> 1) or not (BFsim ≤ 1). The depletion of a given protein was assessed using a majority voting decision rule on 100 simulations. Proteins with simulated low abundances (quantities < 5 fmol) were removed in accordance to the LOD and LOQ determined experimentally. The results of the simulation for PP surface are shown in Fig. 12. The line depicts the simulated number of depleted proteins to achieved the target mass loss. For PP surface, to achieve a 15% mass loss, 125 proteins needed to be non selectively depleted, whereas only 58 are in the experiment. Our analysis shows also (supporting information part SF) that about 80% of the depleted proteins identified experimentally by proteomic show a stronger depletion than proteins from the simulated dataset. These two results demonstrate that protein depletions above 15% in the system are not due to a random process but rather to a selective depletion from the extract./p>